技术原理
DNA Marker是指含有不同长度DNA片段的混合物。在进行DNA电泳时，将DNA Marker和DNA样品同时加入到凝胶中，根据DNA样品条带与DNA Marker条带的位置和明亮度比较，可以粗略的估算出DNA样品的分子量大小和浓度。

产品介绍
ACE全新推出了DL2000 DNA Marker和DL5000 DNA Marker产品。
DL5000 DNA Marker由9条带组成，分别为100、250、500、750、1,000、1,500、2,000、3,000、5,000 bp 组成，适合100 bp到5,000 bp的PCR产物或DNA 片段的琼脂糖凝胶电泳。其中500bp是指示带，显示亮带，条带浓度约为100 ng/5 μL，其余条带浓度均约为50 ng/5 μL。

DL5000 DNA Marker 条带示意图：

DL2000 DNA Marker由6条带组成，分别为 100、250、500、750、1,000、2,000 bp组成，适合100 bp到2,000 bp的PCR产物或DNA片段的琼脂糖凝胶电泳。其中500 bp是指示带，显示亮带，条带浓度约为100 ng/5 μL，其余条带浓度均约为50 ng/5 μL。

DL2000 DNA Marker 条带示意图：




产品特点
①电泳条带大小精确，条带清晰稳定，背景干净。
②已含有1× Loading Buffer的DNA溶液，电泳时可以直接上样，方便快捷。
③含有指示带，且各条带浓度已知，便于粗略估计样品DNA在溶液中的浓度。
④电泳条带分布范围广，适合绝大多数实验需求。

使用方法
①1.5%琼脂糖，上样量5 μL，胶孔宽度为6 mm，电泳缓冲液 1X TBE，15 V/cm。
②推荐上样量为3-5μL。

注意事项
①产品保存条件为4℃，长期保存请置于-20℃。
②使用前不能用高温加热。
③琼脂糖的纯度会影响 DNA条带的清晰度，建议使用高质量的琼脂糖，推荐使用胶浓度为 1.0-2.0%。

常见问题解答

①DNA Marker出现降解的原因？
常见原因：核酸酶污染；保存方式不当。
解决方法：操作过程中及时更换枪头，避免DNA Marker受到电泳缓冲液的污染；建议4℃或-20℃保存，使用前无需高温加热。

②DNA Marker没有完全分离？
常见原因：电泳时间不够；配制的琼脂糖凝胶质量差；电泳缓冲液使用次数过多失效。
解决方法：电泳时间适当延长；重新配制1.0-2.0%凝胶，搅拌均匀；使用新配制的电泳缓冲液。

③DNA条带模糊，不清晰？
常见原因：电泳缓冲液使用次数过多失效；电压过低，电泳时间过长；DNA样品降解或纯度低。
解决方法：使用新配制的电泳缓冲液；根据实验需求和凝胶浓度，选择合适电压和时间；重新制备新的DNA样品或电泳前去除蛋白、无机盐等污染。

④DNA条带出现拖尾的现象？
常见原因：DNA上样量过多；DNA样品原液浓度过大；非特异性扩增过多；电压过高或凝胶浓度过低等。
解决方法：减少凝胶中DNA样品的上样量，对DNA样品进行稀释；做PCR时，提高退火温度，减少循环次数，增加模板量等；适当降低电压，根据DNA分子量大小确定凝胶浓度。